مناطق مورفوژنتیکی مختلف انتهای ریشه با استفاده از تکنیکهای هیستوتکنیک شناسایی و نامگذاری گردیدند.بدین منظور؛ سه گونه پسته p.vera ، p.khinjuk و p.vera var. kalehghouchi ابتدا در دو محیط آب و خاک کشت داده شده و مقاطع انتهای ریشه در اندازه های 2و 4 میلیمتر و نیز 2و4 سانتیمتردر فیکساتور فرمالدئید/گلوتارآلدئید تثبیت و پس از آبگیری و نفوذ پارافین به داخل نمونه ها ، از آنها در پارافین قالب گیری شده سپس با میکروتوم برشهای به ضخامت 7 تا 10 میکرون تهیه گردید. با تکنیکهای رنگ آمیزی سیتولوژیکی و سیتو شیمیایی نظیر رنگهای هماتوکسیلین ، هماتوکسیلین و قرمز کنگو، سبز متیل پیرونین و رنگ شیف(pas) لامهای حاوی نمونه رنگ آمیزی شدند. از برشها عکس تهیه و با آنالیز آنها توسط برنامه گرافیکی فتوشاپ cs4 شمای مورفولوژیکی از انتهای ریشه به دست آمده و مناطق آن در دو محیط آب و خاک مورد بررسی قرار گرفتند، تفاوت شمای مورفولوژیکی و مناطق آن در دو محیط آب و خاک با اندازه گیری و شمارش سلولی مشخص و نتایج آماری به دست آمده با استفاده از آنالیزداده ها توسط برنامه17 spss به دست آمده است . این نتایج به قرار زیر میباشد: تغییرات قابل ملاحظه ای را در مورد رشد ریشه های پسته در دو محیط مشاهده کرده ، متوجه شدیم رشد ریشه در خاک بیشتر از آب می باشد. به طور کلی در هر دو محیط کلاهک بیشترین مساحت و مریستم کمترین مساحت را دارد. با مقایسه رشد طولی چنین به نظر میرسد که سطح بیشتر مناطق سه گونه در هر دو محیط از یک مدل پیروی می کند یعنی ابتداء افزایش و سپس کاهش می یابد . با بررسی مناطق در درون هر گونه نتیجه گرفته می شود که به طور کلی سطح تمام مناطق در محیط خاک بیشتر از شرایط آبی می باشد .البته شاهد یکسری استثناء مخصوصا در گونه وحشی خنجوک می باشیم. در پایان از شمای تهیه شده در نرم افزار 3d max ساختار سه بعدی مناطق مختلف ریشه تهیه گردید.

در این پروژه ما بر روی ریشه گیاهان دو لپه(پسته) و تک لپه (زعفران)در دو محیط آب و خاک کار کردیم . ریشه ها را زمانیکه که به 5 میلیمتر رسیدند برداشت کرده و سپس با روش سیتولوژی و رنگ آمیزی آنها سلولهای کلوملا را در هر دو گونه مورد بررسی قرار دادیم. بر روی گونه پسته اوحدی که رقمی از pistacia . vera بوده و درخانواده anacardiaceae می باشد و همچنین گونه زعفران زراعی که جزء تیره زنبقیان است مطالعه کردیم. مطالعات بر روی این دو گونه و همچنین در دو محیط متفاوت به ما نشان داد که به طور کلی سلولهای کلوملا در هر دو گونه در محیط خاک دارای مساحت بیشتری نسبت به ریشه هایی است که در محیط آب رشد می کنند ولی اگر دو گونه را باهم مقایسه کنیم به این نتیجه می رسیم که چه در محیط آب و چه محیط خاک مساحت سلولهای کلوملا زعفران بیشتر از پسته می باشد.

"zhumeria majdae" از خانواده نعناع یکی از گیاهان سنتی ضدسرطان ، گونه درحال انقراض ، مونوتیپیک و 100% بومی ایران می باشد که با نامهای محلی مورخوش ، موخش و مهرخوش خوانده می شود. این گیاه از نظر ژئوگرافی در جنوب ایران در استان هرمزگان پراکنش دارد. گیاه مورخوش از دیرباز به دلیل خواص داروئی متعدد از جمله درمان بیماریهای گوارشی ، نفخ ودرد و سوزش معده ، اسهال ، دل درد ، مسمومیت ، درد مفاصل ، سردرد ، التیام زخم ، گاستروئید ، قاعدگی دردناک ، عفونت ، کاهش چربی و قند خون مورد مصرف بومی و سنتی بوده است. ترکیبات اصلی عصاره قسمتهای هوایی گیاه ، دو مونوترپن به ترتیب به نامهای لینالول ( بوی لیمو) و کامفور( مقوی قلب ، ضد عفونی کننده ، ضد نیروی جنسی) بوده و مواد فرعی شامل لیمونن ( بوی لیمو) ، اکتان - 3- وان ، b- کریوفیلن می باشد. درپژوهش حاضربا عنوان "مورفوژنز گیاه مورخوش zhumeria majdae در محیط درون شیشه " ، اثرتیمارهای مختلف بر جوانه زنی بذرمورخوش ، آناتومی و سیتولوژی اندامهای مختلف گیاه مورخوش، امکان کشت بافت ازریزنمونه های برگ ، ساقه و ریشه گیاه و ترکیبات فرار لعاب بذر مورخوش مورد بررسی قرار گرفت. بذور ازمنطقه حفاظت شده کوه گنو واقع در30 کیلومتری بندرعباس ، جمع آوری شد. دانه رستهای بدست آمده در آزمایشگاه مواد کشت بافت را تشکیل دادند. ریزنمونه های برگ ، ساقه و ریشه درمحیط کشت موراشیگ - اسکوگ حاوی دوزهورمونهای اکسین و سیتوکینین قرار گرفتند. نتایج نشان داد علی رغم افزایش درصد و سرعت جوانه زنی تیمار دوبار لعابگیری ، این تیمار بر طول مدت جوانه زنی و همچنین برطول گیاهچه اثرمنفی نشان داد. بررسی های آناتومی و سیتولوژیکی گیاه مورخوش ویژگیهای خاص این گونه بومی را نشان داد که ازآنجمله وجود کرکهای خاص غده ای منشعب می باشد که پدیده ای نادر دربین گونه های خانواده نعناع می باشد. در مراحل مختلف کشت بافت ، ضد عفونی میزکار به طریقه بسیارساده منجر به حذف عوامل آلودگی به طورکامل شد که شامل ضدعفونی با آب ژاول 10% وسپس الکل اتیلیک 80% به همراه شعله بود. درمیان ریزنمونه های برگ ، ساقه وریشه ، ساقه دارای حداقل کالوس زایی و اندام زایی بوده و توان ضعیفی را نشان داد. تحلیل آماری داده ها نشان می دهد که تیمارهای جوانه زنی و دوزهورمونهای مختلف بر روی کالوس زایی در سطح 5% معنی داربوده و همچنین بین تیمارهای جوانه زنی و دوزهورمونهای متفاوت بکاررفته شده ، اثر متقابل وجود دارد. مریستمها در گیاه مورخوش همانند تمامی گیاهان نهاندانه دولپه مناطق رشد و خاستگاه کلیه بافتهای تمایز یافته در مراحل رشد درون شیشه مورخوش می باشند. آزمایشات فیتوشیمیایی لعاب بذرمورخوش که با تکنیک gc-mass بدست آمد منجربه شناسایی 37 ماده گردید که غالب آنها در گروه مواد فراربا حلقه بنزنی قرار می گیرند.

پساب های محیط زیست یک بستر ایده ال برای طیف گسترده ای از میکروارگانیسم ها بویژه باکتری ها، ویروس ها و پروتوزوا هستند. این میکرو ارگانیسم ها اکثرا بی زیان هستند و می توانند در تیمار بیولوژیکی پساب ها بکار بروند. استفاده از جلبک های سبز و کوچک اندام نظیر euglena، chlamydomonas و chlorella سریع ترین و کم هزینه ترین روشی است که به طور موثر در تصفیه پساب ها و تولید کود با ارزش و بی بو بکارمی روند و به عنوان کاتالیزور عمل می کنند (هرمزدیار، کیانمهر، 1386). رفتن نیتروژن و جذب آن در بیوماس فیتوپلانکتون ها از فرایندهای اصلی هستند. افزایش مقدار نیتروژن در سلول ها را موازی با افزایش محتوی پروتئین سلولی بیان کردند. افزایش رشد سلول ها نشان دهنده افزایش پروتئین سلولی در ازای جذب نیترات پساب در سلول ها و در نتیجه کاهش یافتن غلظت نیترات در پساب بود. جذب نیترات نسبت به جذب نیتریت یا اوره به صرفه تر است.کلرلا ولگاریس در مقایسه با جلبک های سبز و جلبک های سبز آبی خاصیت جذب بهتر و متعادل تری دارد. به همین خاطر در این تحقیق از این جلبک استفاده شد. در این مطالعه بررسی اثر کلرلا ولگاریس روی میزان کاهش نیترات، فسفات وcod به منظور تصفیه پساب کارخانه نوشابه سازی انجام گرفت و نتایج قابل قبولی نیز مشاهده شد و این جلبک توانست میزان این مواد را تا حدی منطقی کاهش دهد. در واقع جذب این مواد برای رشد جلبک ضروری است و جلبک به دلیل نیاز غذایی که دارد با جذب و تغذیه این مواد به صورت فتوسنتز رشد کرده و می تواند زیست توده ای تولید کند که برای مواردی که ذکر شد به طرز صحیحی استفاده گردد. امید است این پژوهش بتواند زمینه مطالعات بیشتر در این خصوص را فراهم سازد. کلید واژه: کلرلا ولگاریس – پساب نوشابه سازی – تصفیه بیولوژیکی

چکیده ندارد.

چکیده ندارد.

خلاصه مقداری یوبی کوئینون 10 در چهار واریته توتون که بطور وسیعی در ایران کشت میگردند یعنی واریته باسما 178 -2 ویرجینیا کوکر 347، تیکولاک 40 -1 وترابوزن 269 - 12 گردید : بهترین واریته برای استخراج یوبی کوئینون 10 واریته 178 - 2 باسما میباشد و بیشترین مقدار این ماده در برگهای دوماهه آن وجود دارد.به همین علت میزان رشد در قطعات مختلف دانه رست و برگ دوماهه همین واریته مورد مطالعه قرار گرفت بهترین نمونه برای تشکیل کال برگهای لپه ای دانه رست 7 روزه بدست آمد. باتوجه به اینکه غلظت بالای 1(2,4-d میلی گرم در لیتر) و سوکروز 30(میلی گرم در لیتر) و غلظت پایین 0/4(kin میلی گرم در لیتر) باعث افزایش مقدار یوبی کوئینون 10 شده و غلظت بالای 40(iaa میلی گرم در لیتر) سبب افزایش رشد بافت میگردد،بهترین محیط برای ایجاد کال، محیط ms حاوی 2 گرم در لیتر کازئین هیدرولیز شده و هورمونهای فوق الذکر میباشد.مقدار یوبی کوئینون10 موجود در کالهای حاصل از کشت برگهای لپه ای دانه رست 7 روزه از مقدار آن در برگهای لپه ای دانه رست 7 روزه و برگهای سه ماهه بیشتر ولی از برگهای دوماهه کمتراست کشت تعلیقی سلولها و کشت سلولها حاصل در محیط کشت مایع نیز تابع شرایط محیط بوده و درمحیط ms محتوی دو گرم در لیتر کازئین هیدرولیز شده،20 گرم در لیتر سوکروز، یک میلی گرم در لیتر 2,4-d و 0/4 میلی گرم کینتین رشد بیشتری صورت میگیرد بعلاوه مقدار یوبی کوئینون 10 کشت تعلیقی سلول دراین محیط درحد کال و یا کمی بیشتر از آن است و اضافه کردن بعضی از عوامل استرس زا نظیر کلرورسدیم باعث بالا رفتن مقدار یوب کوئینون10 و تجاوز مقدار آن از برگ دوماهه میشود. از طرفی میتوان از کشت سلول برروی محیط جامد استفاده نمود و کلونیهایی از آن بدست آورد که از نظر مقدار یوبی کوئینون 10 یکدیگر متفاوت هستند از بین این کالها باید کالهایی که دارای مقادیر بالاتر یوبی کوئینون 10 میباشد انتخاب شوند و در کشت تعلیقی، کشت گردند.سپس با استفاده از استرس نمکی، میزان یو کوئینون 10 در آنها افزایش داده شود.چون بیشترین مقدار یوبی کوئینون 10 در فاز ایستای کشت سلول وجود دارد و در ضمن هر چه تعداد کشتها بیشتر شود مقدار یوبی کوئینون 10 کاهش مییابد بهتر است برداشت سلول و استخراج یوبی کوئینون 0 در اولین کشت و در مرحله فازایستای رشد صورت گیرد.یوبی کوئینون 10 را میتوان پس از استخراج لیپیدها از گیاه بطور خالص از آن جدا نمود.این عمل، با عبور عصاره لیپیدی از دوستون سیلیکاژل و سپس تین لایرکروماتوگرافی آن برروی سیلیکاژل انجام میگیرد بااین روش ترکیبات دیگری نیز جدا میشود که بعضی از آنها جزء کوئینونها بوده ولی کوئینون 10 محسوب نمیشوند .